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货号SD-16622
规格
本产品为精心优化的间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒,可增强间充质干细胞向成软骨细胞分化的能力。
本产品仅用于科研用途,不可用于诊断、治疗、临床、家庭及其他用途。
产品组成成分及保存
试剂名称 |
体积 |
保存条件 |
有效期 |
地塞米松 |
20μL |
-20℃ |
1 Year |
脯氨酸 |
200μL |
-20℃ |
1 Year |
抗坏血酸 |
600μL |
-20℃ |
1 Year |
TGF-β1 |
2mL |
-20℃ |
1 Year |
丙酮酸钠 |
2mL |
-20℃ |
1 Year |
ITS 添加物 |
2mL |
-20℃ |
1 Year |
双抗 |
2mL |
-20℃ |
1 Year |
胎牛血清 |
20mL |
-20℃ |
1 Year |
基础培养基 |
200mL |
2-8℃ |
1 Year |
甲苯胺蓝染色液 |
5mL |
RT(室温) |
1 Year |
Ø 注意:
1.为保证产品的有效性,请避免反复冻融。
2.现用现配,配制好的预混液保存于2-8℃,有效期1 month;配制好的完全培养基保存于2-8℃,有效期12 hours.
产品使用说明
1. 成软骨诱导分化完全培养基的配制
①室温条件下融化各因子及血清。各因子融化后,瞬时离心,使溶液集中于离心管底部。
(注意:若因子或血清中有沉淀物,属正常现象,无须过滤,避免成分丢失。)
②根据实验用量,于无菌操作台中配制诱导分化完全培养基,建议每次配制50mL,配制比例见下表:
试剂成分 |
配制比例 |
50mL配制体系 |
地塞米松 |
0.01% |
5μL |
脯氨酸 |
0.1% |
50μL |
抗坏血酸 |
0.3% |
150μL |
TGF-β1 |
1% |
500μL |
丙酮酸钠 |
1% |
500μL |
ITS 添加物 |
1% |
500μL |
双抗 |
1% |
500μL |
胎牛血清 |
10% |
5mL |
基础培养基 |
补充至所需体积 |
补充至总体积为50mL |
2. 成软骨诱导分化实验步骤
①建议取第3~5代、纯度达90%以上、状态良好的间充质干细胞,将其消化下来,离心收集,使用间充质干细胞完全培养基调整细胞密度为1~5×105个cell/mL,均匀铺于6孔板中,每孔2mL,置于37℃恒温细胞培养箱中培养。
(注意:此处细胞密度及培养液体积以6孔板为例,若为其它培养器皿,请根据实际情况调整细胞密度及培养液体积。)
②待细胞汇合度达80%~100%时,即可进行诱导分化。
③小心吸弃细胞培养上清,沿孔壁缓慢加入提前配制好的诱导分化完全培养基,每孔2mL,置于37℃恒温细胞培养箱中培养。
(注意:完全培养基加入细胞前需提前置于37℃预热。)
③每2day换用新鲜的诱导分化完全培养基。换液时,若细胞培养上清颜色变为澄清的黄色,是由于细胞量较大,培养基消耗较快导致的,请及时调整为每日换液。
(注意:完全培养基加入前需提前置于37℃预热。)
④细胞诱导3周后,即可进行甲苯胺蓝染色鉴定。
3. 甲苯胺蓝染色分析
①细胞诱导分化结束后,小心吸弃细胞培养上清,1×PBS润洗1~2次。每孔加入1mL细胞固定液(4%中性甲醛溶液等),室温固定30 min。
②吸弃细胞固定液,1×PBS润洗2次。沿孔壁缓慢加入甲苯胺蓝染色液,每孔1mL,室温染色30min。
(注意:染色液底部可能会有沉淀,吸取时尽量不要触及底部。若染色后有沉淀,1×PBS洗去即可。)
③吸出染色液,1×PBS润洗,去掉浮色。显微镜下观察细胞染色效果,背景呈淡蓝色,成软骨细胞呈紫红色。
(注意:染色液可重复使用,建议收集。)
质量控制
ü 无菌检测(细菌、真菌和支原体检测)
ü pH测试
ü 渗透压检测
ü 内毒素
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