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本产品为精心优化的间充质干细胞成软骨诱导分化试剂盒,可增强间充质干细胞向成软骨细胞分化的能力。

本产品仅用于科研用途,不可用于诊断、治疗、临床、家庭及其他用途。

产品组成成分及保存

试剂名称

体积

保存条件

有效期

地塞米松

20μL

-20℃

1 Year

脯氨酸

200μL

-20℃

1 Year

抗坏血酸

600μL

-20℃

1 Year

TGF-β1

2mL

-20℃

1 Year

丙酮酸钠

2mL

-20℃

1 Year

ITS 添加物

2mL

-20℃

1 Year

双抗

2mL

-20℃

1 Year

胎牛血清

20mL

-20℃

1 Year

基础培养基

200mL

2-8℃

1 Year

甲苯胺蓝染色液

5mL

RT(室温)

1 Year

Ø 注意:

1.为保证产品的有效性,请避免反复冻融。

2.现用现配,配制好的预混液保存于2-8℃,有效期1 month;配制好的完全培养基保存于2-8℃,有效期12 hours.

产品使用说明

1. 成软骨诱导分化完全培养基的配制

①室温条件下融化各因子及血清。各因子融化后,瞬时离心,使溶液集中于离心管底部。

(注意:若因子或血清中有沉淀物,属正常现象,无须过滤,避免成分丢失。)

②根据实验用量,于无菌操作台中配制诱导分化完全培养基,建议每次配制50mL,配制比例见下表:

试剂成分

配制比例

50mL配制体系

地塞米松

0.01%

5μL

脯氨酸

0.1%

50μL

抗坏血酸

0.3%

150μL

TGF-β1

1%

500μL

丙酮酸钠

1%

500μL

ITS 添加物

1%

500μL

双抗

1%

500μL

胎牛血清

10%

5mL

基础培养基

补充至所需体积

补充至总体积为50mL

2. 成软骨诱导分化实验步骤

①建议取第3~5代、纯度达90%以上、状态良好的间充质干细胞,将其消化下来,离心收集,使用间充质干细胞完全培养基调整细胞密度为1~5×105个cell/mL,均匀铺于6孔板中,每孔2mL,置于37℃恒温细胞培养箱中培养。

(注意:此处细胞密度及培养液体积以6孔板为例,若为其它培养器皿,请根据实际情况调整细胞密度及培养液体积。)

②待细胞汇合度达80%~100%时,即可进行诱导分化。

③小心吸弃细胞培养上清,沿孔壁缓慢加入提前配制好的诱导分化完全培养基,每孔2mL,置于37℃恒温细胞培养箱中培养。

(注意:完全培养基加入细胞前需提前置于37℃预热。)

③每2day换用新鲜的诱导分化完全培养基。换液时,若细胞培养上清颜色变为澄清的黄色,是由于细胞量较大,培养基消耗较快导致的,请及时调整为每日换液。

(注意:完全培养基加入前需提前置于37℃预热。)

④细胞诱导3周后,即可进行甲苯胺蓝染色鉴定。

3. 甲苯胺蓝染色分析

①细胞诱导分化结束后,小心吸弃细胞培养上清,1×PBS润洗1~2次。每孔加入1mL细胞固定液(4%中性甲醛溶液等),室温固定30 min。

②吸弃细胞固定液,1×PBS润洗2次。沿孔壁缓慢加入甲苯胺蓝染色液,每孔1mL,室温染色30min。

(注意:染色液底部可能会有沉淀,吸取时尽量不要触及底部。若染色后有沉淀,1×PBS洗去即可。)

③吸出染色液,1×PBS润洗,去掉浮色。显微镜下观察细胞染色效果,背景呈淡蓝色,成软骨细胞呈紫红色。

(注意:染色液可重复使用,建议收集。)


质量控制

ü 无菌检测(细菌、真菌和支原体检测)

ü pH测试

ü 渗透压检测

ü 内毒素



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